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【实验资料】悬尾实验

47 人阅读发布时间:2024-01-12 10:14

动物行为学检测--悬尾实验
简介:
       小鼠的悬尾悬挂试验(Tail Suspension Test,TST)最早是由Steru等人于1985年提出的,旨在评估小鼠的抑郁样态。这个实验是基于对抗抑郁药物的研究,通过观察小鼠在一段时间内无法逃脱的悬挂状态来测量其情绪状态。悬尾悬挂试验被广泛应用于研究抗抑郁药物和理解小鼠抑郁症状的行为表现。

原理:
       在这个实验中,小鼠被悬挂在一定高度的位置,其尾巴被固定在特定装置上,使得小鼠无法逃脱或支撑自身体重。当小鼠感到无法逃脱时,它会进入一种被认为类似于抑郁状态的行为——停止挣扎、缩成一团、无动于衷。通过记录小鼠处于这种状态的时间长度来评估其抑郁样态。

研究应用:
       悬尾悬挂试验常用于评估抗抑郁药物的疗效或研究与抑郁相关的神经机制。当小鼠接受抗抑郁药物治疗后,其停留在悬挂状态的时间会减少,被认为是情绪改善的表现。

实验材料:
      悬尾悬挂试验(Tail Suspension Test,TST)的实验设备是一种简单而高效的工具,用于评估小鼠的抑郁样态。该设备一般由一个悬挂架和一个用于稳定小鼠尾巴的夹子或夹持装置构成。
      悬挂架是一个垂直的支架,通常采用坚固的材料,如金属或塑料制成。这个支架的设计允许小鼠悬挂在空中,其尾巴能够自由悬挂下来。支架的高度可以进行调整,以确保小鼠被悬挂在适当的位置,使其无法接触地面或其他支撑物。

       夹子或夹持装置被使用来稳定小鼠的尾巴,以确保小鼠在悬挂状态下无法逃脱。这些夹子通常被设计成轻便而可靠,以防止对小鼠造成不适或伤害。夹子的固定位置通常设在小鼠尾巴的基部,以确保尾巴能够安全地固定在悬挂架上。
       整个装置的设计目的在于观察小鼠在无法逃脱的悬挂状态下的行为表现,以评估其抑郁样态。小鼠通常会表现出停止挣扎、蜷缩成一团以及无动于衷等行为,这种反应被认为类似于抑郁状态。实验者能够记录小鼠在这种状态下停留的时间,从而量化其抑郁样态的程度。


实验流程:

1、准备工作: 在进行实验之前,研究人员需要准备实验室环境和必要的设备。确保悬挂架稳固,夹子或夹持装置适当,以及记录行为的设备正常运作。
2、小鼠选择:选择合适数量和类型的小鼠进行实验。通常,使用健康、年龄相近的小鼠,以确保实验结果的可靠性。
3、悬挂操作:小鼠被悬挂在悬挂架上,其尾巴被夹持在夹子或夹持装置中。小鼠的身体不能接触地面或其他支撑物,使其无法逃脱。
4、行为观察:开始记录小鼠在悬挂状态下的行为表现。主要关注小鼠是否表现出停止挣扎、缩成一团以及无动于衷等抑郁样态的行为。
5、时间记录:记录小鼠停留在悬挂状态的时间,通常以秒为单位。这个参数被认为是评估抑郁样态程度的指标,而药物治疗可能导致这一时间减少。
6、数据分析:使用统计方法分析实验结果。比较不同组别(例如,药物组和对照组)小鼠在悬挂状态下的行为表现,评估药物的疗效。

参考数值:
对照组小鼠悬挂时间约为5-10分钟。
抗抑郁药物治疗组小鼠悬挂时间显著减少,可能降至2-5分钟。


实验评估:
      悬尾悬挂试验(Tail Suspension Test,TST)一种动物行为学测试,广泛应用于研究小鼠的抑郁样态和评估抗抑郁药物的效果。应用范围涉及多个方面,为科学研究提供了重要的信息。

       悬尾悬挂试验被用于评估抗抑郁药物的疗效。研究人员通过观察小鼠在悬挂状态下的行为反应来衡量小鼠的抑郁样态,并评估抗抑郁药物对这一状态的影响。若在药物治疗后,小鼠呈现减少停留时间的趋势,可以推断该药物对缓解抑郁症状具有一定效果。
       悬尾悬挂试验也被运用于研究与抑郁相关的神经机制。通过对小鼠在悬挂状态下的行为进行观察和记录,研究人员能够更深入地了解抑郁症状的发生机制,以及与神经递质、神经回路等方面的关联。这有助于深化对抑郁症的理解,并为寻找新的治疗方法提供线索。
       悬尾悬挂试验同样广泛应用于研究与情绪调控相关的基因、蛋白质和分子机制。科研人员通过比较不同基因型小鼠在悬挂试验中的行为差异,揭示了与情绪调控相关的生物学基础,为相关基因的功能研究提供了实验平台。


常见问题:
1、TST 悬尾实验不建议用较重的大鼠,因为大鼠只能通过它们的尾巴来支持它们的体重,这对大鼠来说是痛苦的。同样的道理,应该注意避免使用异常重的小鼠(例如用于模拟肥胖的小鼠),在这种情况下,实验者应该寻找替代性的测试,例如强迫游泳实验。
2、动物从居住环境带入实验环境应适应一段时间,通常至少一个小时。
3、实验环境应保持安静,突然大的噪音会使小鼠惊慌失措。
4、使用软件分析时,选择合适对比度的背景:白鼠使用黑色背景,黑鼠使用白色背景。
5、每只小鼠的实验空间多大?参考空间在 55cm高*15cm宽*11.5 cm 左右,多通量实验时,为防止动物彼此观察,中间用隔板隔开;动物悬挂在隔间中间,宽度和深度足够大,不能与墙壁接触。
6、悬挂后动物鼻尖与设备地板之前的距离多少?参考距离在 20~25 cm 左右。
7、底部建议放置一个可拆卸的拖盘,收集粪便或尿液。
8、悬挂用的胶带应牢固地粘贴在小鼠尾部和悬挂杆上,并且足够坚固以承受正在测试的小鼠的重量。但是,胶带不应该过于粘滞,因为在实验结束会从尾部移除。胶带尺寸应统一,长度 17 厘米,从一端 2 厘米做标记。这个 2 厘米的部分用于将胶带连接到尾部,而剩余的 15 厘米用于悬挂小鼠;胶带应贴在尾部的尾端,尾部留 2-3 毫米的距离。
9、尾巴攀爬阻止器,小鼠在实验过程,会出现追求和攀爬它们自己的尾巴的现象,这是个普遍的问题。解决方法简单且非常有效:将一段塑料管切成 4 cm 长中空圆柱体(内径1.3cm左右,1.5 g)放置在小鼠尾巴周围就能防止这种尾巴爬行行为。注意的是,在没有使用阻止器之前,已经成功爬上尾巴的小鼠知道逃生是可能的。因此应将这类小鼠排除。
10、分析时仅有前肢但没有后肢介入的小动作可判断为不动;因惯性产生的摆动可判断为不动。
11、实验结束后(通常是 6 分钟),将动物放回鼠笼,应轻轻将胶带从尾巴上拉下来,不要从尾巴上撕扯胶带,避免给动物带来痛苦.
12、清洁用品,每次实验完成,收集粪便和尿液,彻底擦拭悬挂盒。

资料格式:

悬尾实验.docx

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